标题 | 溶血、脂肪血及保存条件对HBVDNA、HIVRNA核酸检测的影响 |
范文 | 漆爱红 【摘要】 目的 探讨溶血、脂肪血及保存条件对乙型肝炎病毒脱氧核糖核酸(HBV DNA)、人类免疫缺陷病毒核糖核酸(HIV RNA)核酸检测的影响。方法 回顾性分析30份行HBV DNA、HIV RNA核酸检测标本的临床资料, 应用罗氏MPX V2.0试剂, 分别于4℃、25℃、37℃及-30℃的条件下测定4 h、24 h、48 h、72 h、1周、4周HBV DNA、HIV RNA的Ct值, 并在不同溶血及脂肪血中测定HBV DNA、HIV RNA的Ct值。结果 -30℃、4℃、25℃温度下保存HBV DNA、HIV RNA的Ct值比较, 差异无统计学意义(P>0.05)。在37℃条件下, HBV DNA在72 h及1周的Ct值高于其他时间及温度下的Ct值, 差异有统计学意义(P<0.05)。高浓度TG并不影响核酸检测(NAT), 差异无统计学意义(P>0.05)。而Hb浓度在97 g/L时出现NAT检测抑制, 其他浓度无明显影响, 差异有统计学意义(P<0.05)。结论 高血脂标本<7.93 mmol/L可以接收, 溶血标本>34 g/L时需重新留取样本, 血液标本检测时间不宜超过72 h, 保存温度以-30℃最佳。 【关键词】 HBV DNA;HIV RNA;溶血;脂肪血;Ct值 DOI:10.14163/j.cnki.11-5547/r.2019.33.111 目前临床对血液制品的检测均采用核酸检测技术(NAT), 能有效检出因病毒变异、隐匿性感染等因素, 导致的污染血液。但在实际工作中, 血液标本容易受到保存温度、溶血、脂肪血等因素影响, 进而导致核酸检测结果出现误差[1]。罗氏MPX V2.0试剂说明书中也提出了相应的指导意见, 但各地区的实验室对HBV DNA、HIV RNA检测的影响因素不同。本研究进一步分析了溶血、脂肪血及保存条件对HBV DNA、HIV RNA核酸检测的影响, 现报告如下。 1 材料与方法 1. 1 材料来源 回顾性分析2018年1~12月在本中心行HBV DNA、HIV RNA核酸检测的30例标本的临床资料。所有血液标本经血清学检测HBV DNA、HIV RNA均为阴性, 同时收集HBV DNA、HIV RNA 检测阳性的血浆, 经病毒浓度定量检测后, 加入血清学及NAT 检测均为阴性的透亮血浆, 制成12~30倍的核酸试剂检测下限浓度的HBV DNA、HIV RNA标本。 1. 2 方法 使用罗氏Z480荧光定量PCR儀核酸检测系统。分别将标本置于-30℃、4℃、25℃、37℃的环境中放置4 h、24 h、48 h、72 h、1周、4周, 采用荧光PCR法检测。收集血液标本中的红细胞悬液、严重乳糜血浆, 将红细胞悬液制成全溶血样本, 将两个样本离心制成溶血样本及脂肪血样本, 然后将溶血样本、脂肪血样本、血清学及NAT检测均为阴性的血浆标本、12~30倍核酸试剂检测下限浓度HBV DNA、HIV RNA标本, 保持这两个样本的HBV DNA、HIV RNA最终浓度约为2~5倍核酸试剂检测下限浓度[2];采用6混样模式, 在全自动STAR加样仪中混匀制成血红蛋白(Hb), 分为浓度97、34、17、8、5及3 g/L的溶血标准样本, 以及TG浓度在7.93、3.80、2.63、1.83及1.49 mmol/L的脂肪血标准样本, 分别行Hb浓度、TG浓度及NAT检测。 1. 3 观察指标 比较不同保存条件下HIV RNA、HBV DNA的Ct值;比较不同Hb、TG浓度下HIV RNA、HBV DNA的Ct值。 1. 4 统计学方法 采用SPSS19.0统计学软件处理数据。计量资料以均数±标准差( x-±s)表示, 采用t检验。P<0.05表示差异有统计学意义。 2 结果 2. 1 不同保存条件下HIV RNA、HBV DNA的Ct值比较 -30℃、4℃、25℃温度下保存HBV DNA、HIV RNA的Ct值比较, 差异无统计学意义(P>0.05)。在37℃条件下, HBV DNA在72 h及1周的Ct值高于其他时间及温度下的Ct值, 差异有统计学意义(P<0.05)。见表1。 2. 2 不同Hb、TG浓度下HIV RNA、HBV DNA的Ct值比较 高浓度TG并不影响NAT检测, 差异无统计学意义(P>0.05)。而Hb浓度在97 g/L时出现NAT检测抑制, 其他浓度无明显影响, 差异有统计学意义(P<0.05)。见表2。 3 讨论 Hb对核酸检测的影响主要是通过卟啉环与Taq酶的不可逆结合, 抑制Taq酶活性[3-6]。脂肪血对核酸检测的影响主要通过乳糜微粒屏蔽和吸收荧光, 产生荧光淬灭作用, 降低了荧光信号强度, 减少扩增效率[7-10]。本研究结果显示, -30℃、4℃、25℃温度下保存HBV DNA、HIV RNA的Ct值比较, 差异无统计学意义(P>0.05)。在37℃条件下, HBV DNA在72 h及1周的Ct值高于其他时间及温度下的Ct值, 差异有统计学意义(P<0.05)。说明HBV DNA在常温下稳定性较高, 在37℃中可能有核酸降解的趋势。HIV RNA在各个不同温度下均很稳定。另外, 本研究中, 高浓度TG并不影响NAT检测, 差异无统计学意义(P>0.05)。而Hb浓度在97 g/L时出现NAT检测抑制, 其他浓度无明显影响, 差异有统计学意义(P<0.05)。 综上所述, 高血脂标本<7.93 mmol/L可以接收, 溶血标本>34 g/L时需重新留取样本, 血液标本检测时间不宜超过72 h, 保存温度以-30℃最佳。 参考文献 [1] 庄养林, 熊丽红, 张鹏飞, 等. 溶血、脂肪血及保存条件对HBV DNA、HIV RNA核酸检测的影响. 天津医药, 2017(10): 23-26. [2] 陈雪, 王欢, 李萌, 等. 脂血、溶血标本对血液核酸检测的影响评价. 云南医药, 2017(4):397-398. [3] 刘小敏, 唐恒锋, 李文郎, 等. 高脂血、溶血标本对荧光定量聚合酶链反应测定低水平HBV-DNA的影响. 检验医学与临床, 2015(21):3217-3218. [4] 庄养林, 熊丽红, 张鹏飞, 等. 标本因素及保存条件对HCVRNA 检测的影响. 实验与检验医学, 2017, 35(2):228-230. [5] 王德文, 师玲玲, 刘赴平, 等. 现行常规采血流程对HIV RNA筛查的影响评估. 中国热带医学, 2007, 7(11):2100-2101. [6] 康淑霞. 人为标本溶血及高脂肪血对重氮法检测胆红素结果的影响//中华医学会第八次全国检验医学学术会议暨中华医学会检验分会成立30周年庆典大会资料汇编. 2009. [7] 庄养林. 溶血、脂肪血及保存条件对血液病毒核酸筛查影响的研究. 南昌大学, 2017. [8] 张永昌, 欧山海, 谢金镇, 等. 核酸检测技术在血液检测中的应用. 临床输血与检验, 2014, 16(4):399-400. [9] 崔莉, 梁亦洁, 张金萍, 等. 罗氏核酸检测系统性能验证. 兵团医学, 2017(4):38-43. [10] 胡越, 高犁, 蒋瑞馨. 罗氏核酸检测试剂在无锡血站的应用分析. 实验与检验医学, 2018, 36(1):127-128. [收稿日期:2019-03-27] |
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