标题 | 基于DNA模板点击化学和催化发夹型DNA自组装反应的新型均相电化学生物传感器检测miRNA-21 |
范文 | 汤玉娇 戴诗岩 周羽婷 程圭芳 何品刚 方禹之 摘?要?构建了一种利用DNA模板点击化学和催化发夹型DNA自组装反应(Catalyzed hairpin assembly,CHA)指示并放大信号,检测miRNA-21的新型均相电化学生物传感器。根据目标物miRNA-2的序列设计了两种发夹结构的探针,分别修饰5-氨基-2,3-二氰基-1,4-萘醌(ADNQ)和3(2-呋喃)丙酸(FPA),利用目标物miRNA-2引发的两种探针间的催化发夹组装使ADNQ和FPA的分子间距缩小,发生Diels-Alder反应,在实现目标物循环信号放大的同时,破坏ADNQ的化学结构,导致电化学响应信号降低,据此检测miRNA-21的浓度。采用循环伏安法(CV)、差分脉冲伏安法(DPV)和凝胶电泳等考察了此传感器的分析性能。结果表明,在0.1~1.0×104 pmol/L浓度范围内,此传感器响应电流变化值与miRNA-21浓度的对数呈线性关系,检出限为0.037 pmol/L(S/N=3)。将此传感器用于小鼠血清和全血裂解液样品的检测,结果表明, 本传感器适用于miRNA-21的检测。 关键词?DNA模板点击化学; Diels-Alder反应; 催化发夹组装; 电化学生物传感器 1?引 言 miRNAs是一类长度为19~25个核苷酸的非编码RNA,在多种肿瘤中表达水平高于正常水平,可作为代表性的肿瘤生物标记物,如miRNA-21在乳腺癌细胞和上皮卵巢癌细胞中的表达水平显著高于正常水平[1~3]。因此,建立快速有效的miRNA分析检测方法对肿瘤的诊断和预后有重要意义。 目前,检测miRNA的方法主要有Northern blotting法[4]、实时荧光定量PCR法[5]、原位杂交法[6]和微阵列芯片法[7]等。这些方法各有自身的优点,如实时荧光定量PCR法检测速度快、灵敏度高。然而,这些方法通常需要昂贵的试剂,对设备和操作人员要求较高[8]。相比之下,电化学生物传感器成本低、灵敏度高、特异性好、操作简单、易于小型化,具有明显的实际应用优势[9,10]。 点击化学反应是一类反应条件温和的反应[11,12],已被用于构建传感器[13~15]。5-氨基-2,3-二氰基-1,4-萘醌(ADNQ)具有良好的电化学活性,可与3(2-呋喃)丙酸(FPA)发生点击化学反应,导致其电化学活性降低。利用此特性,本研究构建了一种基于DNA模板点击化学和催化发夹型DNA自组装反应[16~18]的新型均相电化学DNA生物传感器,用于miRNA-21的检测,检测原理如图1所示。当不存在目标物miRNA-21时,Probe-ADNQ和Probe-FPA不发生相互作用,分别修饰在Probe 1和Probe 2上的ADNQ和FPC距离较远,不能发生点击化学反应,因此Probe-ADNQ能在工作电极上产生一个良好的ADNQ的DPV特征信号。当存在miRNA-21时,miRNA-21通过碱基互补配对将Probe-ADNQ的发夹结构打开,使Probe-ADNQ茎部的碱基序列暴露出来,然后通过碱基互补配对将Probe-FPA的茎环结构打开,并将miRNA-21替换下来,使其进入下一个催化循环;在目标物miRNA-21的作用下,Probe-ADNQ和Probe-FPA通过碱基互补配对形成DNA双链,分别修饰在Probe 1和Probe 2上的ADNQ和FPC的距离被拉近,发生点击化学反应,ADNQ的分子结构被破坏,其在工作电极上产生的ADNQ的DPV特征信号降低信号降低值与miRNA-21在一定浓度范围内呈线性关系。 基于此可实现miRNA-21的定量检测。将本方法用于小鼠血液样品中miRNA-21的检测,结果表明, 本方法实用性良好。 2?实验部分 2.1?仪器与试剂 CHI660电化学工作站(上海辰华仪器有限公司)。石墨烯、5-氨基-2,3-二氰基-1,4-萘醌(ADNQ)、3(2-呋喃)丙酸(FPA)、1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亚胺盐酸盐(EDC·HCl)、琥珀酸(SA)和N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)均购自上海源叶生物科技有限公司。其它试剂均为分析纯。实验用水为超纯水(电阻率>18 MΩ cm,由上海纯浦实业有限公司超纯水仪制备)。所用缓冲溶液为Tris-HCl缓冲液(10 mmol/L Tris-HCl, 15 mmol/L KCl, 4 mmol/L MgCl2, pH=7.4)和Na2CO3-NaHCO3缓冲液(0.05 mol/L, pH=8.9)。寡聚核苷酸均由上海生物工程技术服务有限公司合成,序列见表1。 2.2?实验方法 2.2.1?Probe-ADNQ和Probe-FPA的合成?取0.28 g SA、1.36 g EDC·HCl、0.66 g NHS和10 mL DCM置于25 mL圆底烧瓶,室温下搅拌反应3 h,将DCM蒸干,用水洗涤产物,55℃烘干,得到N,N'-(丁二酰二氧基)二琥珀酰亚胺(DSS)固体。将18 nmol Probe1、4 mL Na2CO3-NaHCO3缓冲液(pH=8.9)、0.05 g DSS和4 mL二甲基亚砜(DMSO)在25 mL圆底烧瓶中混合,室温下搅拌反应4 h,用截留分子量为3000的超滤管超滤纯化。在纯化产物中加入4 mL Na2CO3-NaHCO3缓冲液(pH=8.9)、4 mL DMSO和0.06 g ADNQ,在25 mL圆底烧瓶中混合,室温下搅拌反应4 h。超滤纯化,所得的Probe-ADNQ溶于PBS(pH=7.4), 4℃保存。 取0.5 g FPA、 1.71 g EDC·HCl、 1.03 g NHS、 10 mL DCM和0.5 mL二异丙基乙胺,在25 mL圆底烧瓶中混合,室温下搅拌反应3 h,用水洗涤,有机相用无水Na2SO4干燥后,将DCM蒸干,保留固体。将18 nmol Probe 2、 0.155 g固體产物、4 mL DMSO和4 mL Na2CO3-NaHCO3缓冲液(pH=8.9)在25 mL圆底烧瓶中混合,室温下搅拌反应4 h,超滤纯化,所得Probe-FPA溶于PBS(pH 7.4),4℃保存。 2.2.2?石墨烯纳米金复合材料的合成?将1 mg石墨烯和0.1 g抗坏血酸充分分散到10 mL水中,加入2 mL 1%(w/w)氯金酸溶液,室温下搅拌反应8 h,离心,产物分散到1 mL水中。 2.3?电化学检测 用0.05 μm氧化铝粉抛光打磨玻碳电极(d=3 mm), 用氮气吹干,在电极表面滴涂5 μL石墨烯纳米金复合材料,50℃下烘干。 Probe-ADNQ和Probe-FPA溶液浓度均为2 μmol/L,与不同浓度的miRNA-21在Tris-HCl缓冲液(pH=7.4)中反应,反应结束后取5 μL反应液滴涂到石墨烯纳米金修饰电极的表面,50℃下烘干,于PBS溶液(pH 7.4)中用差分脉冲伏安法(DPV)采集电化学信号。三电极体系:修饰玻碳电极为工作电极,Ag/AgCl电极和Pt丝电极为参比电极和对电极,扫描范围为0.60~0.15 V,扫描速度为0.1 V/s。 3?结果与讨论 3.1?传感器的可行性实验 考察了利用点击化学指示电化学传感器信号的可行性。如图2A所示,浓度较高时,ADNQ有很强电化学响应, FPA没有明显的电化学信号,ADNQ和FPA在室温下反应1 h后, 电化学响应明显降低,说明浓度较高时,ADNQ和FPA间发生点击化学反应的机率大,ADNQ的化学结构被破坏,失去电化学活性。如图2B所示,浓度较低时,ADNQ有较强的电化学响应信号,FPA没有明显的响应信号,低浓度的ADNQ和FPA在室温下反应1 h后,其电化学响应信号无明显变化,说明浓度较低时ADNQ和FPA间发生点击化学反应的机率很低,ADNQ的化学结构不易被破坏,电化学响应信号无明显降低。上述结果表明,可利用ADNQ和FPA间的点击化学反应指示电化学传感器的响应信号。 考察了采用ADNQ和FPA修饰探针指示传感器信号的可行性。如图3所示,Probe-ADNQ有较强电化学信号(图3曲线a),Probe-FPA无明显电信号(图3曲线b)。当不存在目标物miRNA-21时,Probe-ADNQ和Probe-FPA的反应混合物有较强的电化学信号(图3曲线c),说明Probe-ADNQ和Probe-FPA间不能形成双链,修饰在探针上的ADNQ和FPA距离远,不能发生点击化学反应。当存在目标物miRNA-21时,Probe-ADNQ和Probe-FPA的反应混合物电化学信号显著下降(图3曲线d), 说明Probe-ADNQ和Probe-FPA间形成双链,修饰在探针上的ADNQ和FPA距离被拉近,发生点击化学反应。上述结果表明,可通过目标物miRNA引发Probe-ADNQ和Probe-FPA形成双链,使修饰在探针上的ADNQ和FPA发生点击化学反应,指示电化学传感器的响应信号。 采用聚丙烯酰胺凝胶电泳方法考察目标物是否能引发Probe 1 和Probe 2形成双链。如图4所示,不存在目标物miRNA-21时,泳道e只有两个条带,且分别与泳道b和泳道c中Probe 1 和Probe 2的位置对应,Probe 1与Probe 2未形成双链;目标物miRNA-21存在时,泳道d中出现了一个新的条带,且分别与Probe 1和Probe 2对应的两个条带明亮度变暗,表明Probe 1和Probe 2形成双链。电泳实验结果表明,目标物miRNA-21可引发Probe 1和Probe 2形成双链。 3.2?实验条件的优化 探针浓度、反应时间和反应温度对传感器的检测性能有重要影响。当探针浓度过低时,miRNA-21引发Probe-ADNQ和Probe-FPA形成双链的效率低,不利于检测。如图5A所示,随着探针浓度增加,传感器响应电流ΔI增大,当探针浓度为2.0 μmol/L时,传感器ΔI趋于稳定。因此,选择最适探针浓度为2.0 μmol/L。如图5B所示,随着反应时间延长,传感器ΔI先增加,50 min后达到稳定。选择50 min为最佳反应时间。反应温度过低时,反应速率低;反应温度过高,不利于DNA链之间的杂交。如图5C所示,随着反应温度升高,传感器ΔI先增加, 30℃时ΔI开始下降。因此,选择最佳反应温度为30℃。 3.3?传感器的特异性 用本传感器分别检测0.1 nmol/L的miRNA-21、单碱基错配miRNA、三碱基错配miRNA、完全不互补miRNA的响应信号。如图6所示,单碱基错配miRNA、三碱基错配miRNA和完全不互补miRNA的检测信号都很弱,分别为miRNA-21检测信号的12.8%、 7.1%和6.9%,说明传感器具有良好的特异性。 3.4?传感器的分析性能 在最佳实验条件下,对不同浓度的miRNA-21进行了检测。以2.0 μmol/L Probe-ADNQ的信号为起始信号, 以2.0 μmol/L Probe-ADNQ、 2.0 μmol/L Probe-FPA和miRNA-21反应后的信号作为结束信号,以起始信号与结束信号之差ΔI作为传感器输出信号。如图7A所示,随着miRNA-21浓度增加(0、 0.1、 1、 10、 100、 500、 1000、 5000和10000 pmol/L),传感器DPV峰电流逐渐减小,说明miRNA-21引发probe-ADNQ和Probe-FPA形成双链的效率增加,分别标记在探针上的ADNQ与FPA发生点击化学反应的效率增加,ADNQ的化学结构被破坏,其特征电信号下降。如图7B所示,当miRNA-21浓度在0.1~1.0×104 pmol/L范圍内时,ΔI随miRNA-21浓度对数值的增加而线性增大,其线性回归方程ΔI(μA)=0.31+0.08lgCmiRNA-21 (pmol/L), R2=0.9793,检出限为0.037 pmol/L(S/N=3)。 3.5?实际小鼠血样分析 采用传感器对小鼠全血和血清样品中的miRNA-21进行了测定,考察传感器的实用性, 小鼠全血和血清中未检出miRNA-21,标准添加实验结果如表2和表3所示。结果表明,小鼠血清中的加标回收率为92.0%~105.0%,RSD小于5.5%;全血裂解液中的加标回收率为96.0%~104.0%,RSD小于7.0%,表明本传感器实用性良好,可用于实际样品的检测。 4?结 论 构建了一种基于DNA模板点击化学和催化发夹型DNA自组装反应的新型均相电化学生物传感器,用于miRNA-21的检测。传感器不需要将探针固定在电极表面,制备简单快速;其与目标物的识别与检测发生在溶液中,位阻小,识别效率高;使用催化发夹组装放大信号,不使用酶;此传感器利用miRNA-21引发分别标记在探针上的ADNQ和FPA间的点击化学反应指示传感器信号,仅需5 μL反应液即可获得可观的信号响应。此传感器操作简单、灵敏度高、特异性好,具有良好的实际应用价值。 References 1?Croce C M, Calin G A. Cell, 2005, 122(1): 6-7 2?Farazi T A, Spitzer J I, Morozov P. J. Pathol., ?2015, ?223(2): 102-115 3?Gasparri M L, Besharat Z M, Besharat A R. Current Knowledge of miRNAs as Biomarkers in Breast Cancer,Recent Trends in Cancer Biology: ?Spotlight on Signaling Cascades and microRNAs, Springer, Cham., ?2018: ??221-231 4?Koscianska E, Staregaroslan J, Sznajder L J. Bmc Mol. Biol., ?2011, ?12(14): 1-7 5?Radonic' A, Thulke S, Mackay I M. Biochem. Biophys. Res. Commun., ?2004, ?313(4): ?856-862 6?Muchtar E, Dispenzieri A, Kumar S K. Leukemia, ?2017, ?31(7): ?1562-1569 7?Sui W, Shi Z, Xue W. Oncol. Rep., ?2017, ?37(3): ?1804-1814 8?Fu S W, Chen L, Man Y G. J.Cancer, ?2011, ?2(1): ?116-122 9?Wang J. Biosens. Bioelectron., ?2006, ?21(10): ?1887-1892 10?Zhou M, Dong S. Acc. Chem. Res., ?2011, ?44(11): ?1232-1243 11?Hoyle C E, Bowman C N. Angew. Chem. Inter. Edit., ?2010, ?49(9): ?1540-1573 12?Wurz R P, Dellamaggiore K, Dou H. J. Med. Chem., ?2017, ?61(2): ?453-461 13?Qiu S, Gao S, Liu Q. Biosens. Bioelectron., ?2011, ?26(11): ?4326-4330 14?NIE Ji, LI Jian-Ping, DENG Huan, PAN Hong-Cheng. Chinese J. Anal. Chem., ?2015, ?43(4): 609-617 聂 骥, 李建平, 邓 欢, 潘宏程. 分析化学, ?2015, ?43(4): ?609-617 15?Ran Q, Peng R, Liang C. Talanta, ?2011, ?83(5): 1381-1385 16?Yu J, Li B, Milligan J N. J. Am. Chem. Soc., ?2013, ?135(20): 7430-7433 17?YU Bei, CHEN Shi-Jian, XU Tian-Xiong, ZHAN Zhong-Xu, XU Heng-Yi. Journal of Instrumental Analysis, ?2018, ?37(12): 1514-1520 俞 蓓, 陳时建, 徐天雄, 占忠旭, 许恒毅. 分析测试学报, ?2018, ?37(12): ?1514-1520 18?Zhuang J, Lai W, Chen G. Chem. Commun., ?2014, ?50(22): ?2935-2938 |
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