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标题 脚板薯的组织培养与快速繁殖研究
范文

    杜尚广

    

    

    

    摘要:为建立一套完整的脚板薯离体快速繁殖体系,以脚板薯茎段为试验材料,研究脚板薯茎段表面灭菌、丛生芽诱导、无菌苗增殖及移栽等。结果表明,脚板薯茎段丛生芽诱导的最佳培养基为MS+NAA 0.4 mg/L+6-BA 3.2 mg/L+烯效唑2.9 mg/L+活性炭 1.2 g/L,诱导率为93.6%;丛生芽增殖的最佳培养基为MS+NAA 0.7 mg/L+6-BA 0.8 mg/L+烯效唑2.9 mg/L+活性炭1.6 g/L+蔗糖40 g/L,增殖倍数为4.61,组培苗炼苗成活率达70%以上。本研究建立了脚板薯的离体快速繁殖技术体系,研究结果可为脚板薯的工业化育苗提供技术参考。

    关键词:脚板薯;快速繁殖;增殖;组织培养

    脚板薯(Dioscorea batatas Decne)是薯蓣科薯蓣属一年生或多年生藤本植物,因其地下块茎呈不规则的扁块形,形如脚掌而得名[1],薯块单块质量1~2 kg,颜色有紫红色、白色2种。脚板薯以其肉质紫红、块大味美,并具有健脾、养胃、补肝等功效而闻名[2],现已广泛种植于广东省、广西壮族自治区、福建省、江西省、湖南省等地。由于脚板薯块茎中富含蛋白质、淀粉、维生素、矿物质、以及较多的皂苷等成分,目前已作为一种经济作物在全球范围内大面积种植[3-5]。脚板薯中所含皂苷具有降血脂、调节血压和辅助治疗癌症的作用,具有很高的营养价值和药用价值,是一种具有很大开发价值的药食同源产品[4-6]。

    近年来,随着对脚板薯化学成分及药理作用的研究不断深入,以及人们对健康饮食要求的逐渐提高,脚板薯的需求量进一步增加[7-8]。传统的无性繁殖方式出苗早、生长快,但繁殖系数低,用种量较大;长期的无性繁殖导致品种严重退化,产量大幅降低,迫切需要对脚板薯栽培品种进行脱毒改良,建立快速繁殖体系。传统的种子繁殖方式易造成薯蓣科植物后代单株之间差异较大,难以稳定保持优良性状。组织培养快繁技术是以优良无性系为外植体,通过无菌培养快速得到组培苗;该技术具有产量高、易于生产管理且能保持原有品种的优良性状等优点,可以有效克服传统无性繁殖和种子繁殖存在的问题[9-10]。

    目前,有关薯蓣科组织培养方面的研究国内外均有报道。Malaurie等对不同品种山药进行了增殖和生根培养[11]。Jasik等在培养基中添加茉莉酸对山药进行诱导[12]。Alizadeh等对菊叶薯蓣进行体外增殖,表明适量外源激素对薯蓣科组织培养有较大促进作用[13]。王应想等对脚板薯试管苗的生长、茎节产生和零余子诱导进行研究,但尚未建立离体快繁技术体系[14]。目前,对脚板薯离体快繁的研究尚未见报道,本研究采用脚板薯的茎段为外植体,通过对脚板薯茎段表面灭菌、不定芽诱导、无菌苗增殖及移栽等,增殖过程同步壮苗和生根,省时省力且移栽成活率很高,无需专门进行壮苗和生根培养;本研究建立了离体快速繁殖体系,以期为脚板薯工厂化育苗及脱毒苗的培育提供技术保障。

    1 材料与方法

    1.1 材料与试剂

    脚板薯块茎由江西省万载县辉明有机农业科技开发有限公司提供。琼脂、蔗糖等所用试剂均为国产分析纯。

    1.2 仪器

    ZY100型同时蒸馏萃取仪,上海银泽仪器设备有限公司生产; LMQC型立式灭菌锅,山东新华医疗器械股份有限公司生产;SW-CJ-2FD净化工作台,上海博迅实业有限公司生产;JY3002电子天平,上海舜宇恒平科学仪器有限公司生产;艾柯DZG-303A超纯水仪,成都唐氏康宁科技发展有限公司生产; RDX型智能人工气候箱,宁波东南仪器有限公司生产。

    1.3 试验方法

    1.3.1 外植体的表面灭菌 选择块茎大、无病虫害、肉质紫红色的脚板薯,将其切成小块,每块50~100 g,确保每小块块茎均带有芽眼;然后,将每小块的切面沾满草木灰,放在太阳下晒1~2 h,室内晾1~3 d;待切面愈合后再播种,可防止切口腐烂,促使发芽整齐。当芽长至2~3 cm时,取1 cm茎段,每个茎段含有1个节点,洗衣粉浸泡10 min,流水冲洗30~60 min,在无菌工作台上利用2步法脱毒,即75%乙醇消毒30 s,无菌水冲洗2~3次,然后用0.1%氯化汞浸泡2~3 min,无菌水冲洗4~5次。将处理好的外植体接种到MS培养基中。

    1.3.2 丛生芽诱导培养基的筛选 为获得最适丛生芽诱导培养基,以MS培养基为基本培养基,选用L16(45)设计进行4因素4水平的正交试验,14 d后,统计丛生芽诱导率;根據设计在每种培养基中接种40个茎段,每种20瓶,每瓶2个。

    丛生芽诱导率=诱导出丛生芽的外植体数÷接种的外植体数×100%。

    1.3.3 丛生芽增殖培养基的优化 以MS+NAA 0.4 mg/L+6-BA 3.2 mg/L+烯效唑2.9 mg/L+活性炭1.2 g/L+蔗糖40 g/L+琼脂7 g/L为诱导培养基,培养茎段20 d。选用MS培养基为基本培养基,添加1.6 g/L活性炭以防褐化,并选用L16(45)设计进行4因素4水平的正交试验。每种培养基中转接40个上述含有丛生芽的茎段,培养20 d,观察、统计每组的增殖倍数。

    增殖倍数=丛生芽数÷接种的外植体数。

    1.3.4 炼苗和移栽 将接种于丛生芽增殖培养基中的芽体培养60 d后,向组培瓶中加入丛生芽增殖的液体培养基,约1 cm 深,15 d之后进行室外炼苗。将组培瓶从组培室中移至室外阴凉处放置5~7 d,然后开盖保持5~7 d,在此过程中喷洒少量水,保持湿润环境。取出组培苗,用自来水洗净根部残留的培养基,再用0.1% KMnO4浸泡30 s,最后用自来水清洗,将处理好的组培苗移栽至土壤 ∶ 珍珠岩(1 ∶ 3)的混合基质中,组培苗长出3片新叶即计为成活,统计移栽成活率。

    1.4 培养条件

    组培室白天温度(25±2) ℃,夜间温度(20±2) ℃,光周期12 h/d,光照度3 000 lx。

    2 结果与分析

    2.1 丛生芽诱导培养

    激素是诱导丛生芽分化的关键物质,对丛生芽的生长起到决定性的作用。接种5 d,脚板薯茎段节点处开始萌动,然后芽不断生长膨大,叶片逐渐由紫红色变成深红色;14 d后,丛生芽生长速度加快,设计正交试验探索不同激素组合对脚板薯丛生芽的影响(表1至表3)。

    从表1可以看出,4个因素对脚板薯诱导的影响大小依次为活性炭>烯效唑>NAA>6-BA。分析结果表明,当NAA浓度为0.4 mg/L时,诱导率最高,较低浓度的NAA有助于芽的生长;当6-BA濃度为3.2 mg/L时,脚板薯的丛生芽诱导效果最好,原因是不同浓度的6-BA具有促进或抑制酶的活性,从而影响芽的生长;当活性炭浓度为1.2 g/L时,诱导出的腋芽数最多,长势最好,随着活性炭浓度的升高,脚板薯褐化情况显著改善,但腋芽数目降低、长势较差;可能是活性炭吸附脚板薯切口处的酚类物质,防止褐化的产生,同时也吸附培养基中丛生芽诱导所需的激素和营养物质,不利于诱导的进行;当烯效唑浓度为2.9 mg/L时,叶片浓绿、茎粗壮、长势最好,诱导率最高;随着烯效唑浓度的增大诱导率先增大后减小,可能是高浓度的烯效唑活性较强,抑制芽的生长。由极差分析可知,丛生芽诱导效果最佳的组合是A2B1C1D2,即:MS+NAA 0.4 mg/L+6-BA 3.2 mg/L+烯效唑2.9 mg/L+活性炭1.2 g/L。在此条件下试验在正交表的16次试验中并没有出现,通过做补充试验,结果得到丛生芽诱导率为93.6%、芽数达2.05个,大于正交试验结果中的诱导率最高值(90.0%)、芽数(1.97个),说明利用正交试验优化丛生芽诱导是成功的。

    2.2 丛生芽增殖培养

    脚板薯组培苗在16种不同培养基上培养20 d后,对丛生芽的数量进行统计,结果见表4、表5。从表4可以看出,NAA、6-BA、烯效唑、蔗糖4个因素对脚板薯丛生芽增殖生长影响差异较大,不同因素影响大小依次为NAA>烯效唑>蔗糖>6-BA。随着NAA浓度增大,增殖倍数呈先增大后减小趋势,当NAA浓度为0.7 mg/L时增殖倍数最大;当6-BA浓度为0.8 mg/L时增殖倍数最高;随着蔗糖浓度的增加,增殖倍数先增大后减小,当蔗糖浓度达40 g/L时增殖倍数最高;烯效唑具有控制营养生长,抑制细胞伸长、缩短节间、矮化植株,促进侧芽生长的作用,当烯效唑浓度为3.1 mg/L时增殖倍数最大。本试验结果表明,不同培养基对丛生芽的增殖无显著影响,最佳增殖效果的培养基为:MS+NAA 0.7 mg/L+6-BA 0.8 mg/L+烯效唑2.9 mg/L+蔗糖 40 g/L+活性炭1.6 g/L,增殖倍数为4.61。

    在培养的过程中,当MS培养基中添加NAA 0.7 mg/L、活性炭1.6 g/L、烯效唑3.1 mg/L、6-BA 0.8 mg/L、蔗糖40 g/L 时,丛生芽生长快、繁殖系数高;叶色浓绿、茎段粗壮,所以无需专门进行壮苗培养;同时,茎段节点处萌动生根并形成发达的根系,有时根的生长速度高于茎的生长 (图1-B、图1-C),炼苗和移栽环节成活率较高,可满足生产的需要,所以无需再进行生根培养。即,丛生芽增殖过程中壮苗和生根同步进行,并取得很好的效果,所以,本试验无需专门进行壮苗和生根培养。这大大缩短快繁体系所用时间、降低培养成本,建立更为有效的脚板薯快繁体系(图1-D)。

    2.3 炼苗和移栽

    完整的再生植株炼苗之前(图1-B),在组培瓶中加1 cm 深的液体增殖培养基,组培苗生长更快、茎秆更加粗壮,对比发现,加液体培养基比不加液体培养基的组培苗平均高约1.5 cm;并且在炼苗过程中,组培瓶内部环境湿润,能够有效防止叶片枯萎,提高成活率。

    处理后的组培苗(图1-C),剪掉失水的叶片,可有效防止叶片细菌孳生,污染致死。组培苗较为脆弱,叶片易失水,移栽置于阴凉通风的温室大棚中,可提高成活率。研究发现,炼苗成活率达70%以上。

    3 结论

    本试验得到了脚板薯茎段丛生芽诱导的最适培养基为MS+NAA 0.4 mg/L+6-BA 3.2 mg/L+烯效唑2.9 mg/L+活性炭1.2 g/L,诱导率为936%;丛生芽增殖的最佳培养基为MS+NAA 0.7 mg/L+6-BA 0.8 mg/L+烯效唑2.9 mg/L+活性炭1.6 g/L+蔗糖40 g/L,增殖倍数为4.61;增殖过程同步进行壮苗和生根,炼苗成活率可达70%以上。本研究建立了脚板薯脱毒快繁技术体系,为工厂化育苗提供技术支持。

    参考文献:

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