牙鲆、大菱鲆传染性造血器官坏死病病毒检测报告

    申红旗++鲁梦雪++蒋红艳

    

    牙鲆、大菱鲆是我省海水养殖主要品种，近年来在养殖生产过程中发生疫病时，使用抗菌类药物往往效果不佳。为摸清上述鱼病是否因病毒引起，今年4-5月，笔者采集了部分人工养殖的牙鲆、大菱鲆样品，进行了鱼传染性造血器官坏死病病毒（IHNV）实验室检测，有关情况报告如下。

    1 采样

    4月中下旬，从我省沿海6个海水鱼养殖单位采集了牙鲆、大菱鲆成鱼样品11个，其中牙鲆样品5个，大菱鲆样品6个，每个样品1.5 kg，冷藏运至实验室。

    2 实验室检验

    本实验采用逆转录-聚合酶链反应（RT-PCR）检测方法。

    2.1 IHNV的分离

    2.1.1 制样 按照GB/T18088-2000的规定，采取样品鱼的肝、肾、脾。

    2.1.2 样品处理 制好的样品用组织匀浆器低温匀浆。匀浆后的样品按1∶10的最终稀释度悬浮于细胞培养液（含有1 000 IU/mL的青霉素和1 000 μg/mL的链霉素）中，4 ℃孵育过夜。7 000 r/min离心15 min，收集上清液。

    2.1.3 IHNV分离 处于对数生长期的FHM细胞以适宜密度接种至细胞培养板内，培养约24 h。收集的样品上清液用细胞培养液再做两次10倍稀释，然后将适当体积的稀释度为1∶10、1∶100、1∶1000的上清液分别接种至FHM单层细胞中（正对照为含阳性IHNV的病毒悬液；负对照为细胞培养液），17 ℃吸附1 h，再加入细胞培养液，置于17 ℃培养。7 d内每天用导致显微镜观察并记录细胞是否出现病变。

    2.2 IHNV鉴定

    2.2.1 RNA提取及cDNA合成 将对照细胞和有CPE的细胞冻融一次，取冻融后的细胞悬液按GB/T 15805.2-2008的方法抽提RNA，抽提好的RNA按下列程序进行反转录，反转录体系及程序如下：

    体系中加入10 μL模板，2.5 μLR1，2.5 μL水，共15 μL，70 ℃反应5 min，立即冰浴，瞬时离心；再加入5 μL逆转录酶浓缩缓冲液（5x），2 μLdNTPs，0.5 μL RI（20U），1 μL AMV（10U），1.5 μL 水，共25 μL ，42 ℃反应1 h，产物作为模板。

    2.2.2 套式PCR 见表1。

    反应体系在PCR扩增仪中按照94 ℃预变性4 min，再94 ℃ 1 min，55 ℃ 1 min，72 ℃ 1 min，30次循环，然后72 ℃ 8 min，最后4 ℃保温的程序反应。

    2.2.3 琼脂糖电泳 8 μL PCR产物+2 μL 5x loading buffer混样，混好的样点入TBE缓冲液配制成的1.5%的琼脂糖凝胶孔内，5 V/cm电泳约40 min。凝胶成像仪中观察并拍照记录。

    3 检验结果

    3.1 接种细胞培养结果

    待测样品接种细胞后3～4 d，编号0075、0076、0078、0079、0080的5个样品细胞培养中出现细胞病变（CPE），0077未发生病变。见图1 。

    3.3 基因测序结果

    5个阳性样品PCR代谢物送有关单位基因测序，符合率98%。

    4 小结

    采集的11个牙鲆、大菱鲆样品中，共检出IHNV阳性5例，IHNV阳性检出率为45.45%。其中牙鲆IHNV阳性2例，阳性率40.00%，大菱鲆牙鲆IHNV阳性3例，阳性率50.00%；6个养殖单位中有2个单位的样品检出IHNV阳性，检出率为33.33%。详见表2。

    本次检测实验证明，我省养殖的部分牙鲆、大菱鲆体内存在传染性造血器官坏死病病毒。IHN是农业部公告第1125号规定的二类水生动物疫病，具有很强的传染性与危害。因此，在牙鲆、大菱鲆养殖苗种阶段应做好检疫工作，避免引进带有IHNV阳性的鱼苗。养殖过程中如发现鱼眼球突出、浑身出血等症状，应考虑感染IHN疫病的可能性，使用聚维酮碘等抗病毒药物进行防控。

    （收稿日期：2015-08-31）